jueves, 22 de octubre de 2015

Ajuste corneal post cirugía refrativa Láser: Haigis-L

Sobre cálculo de lentes intraoculares en pacientes previamente operados de cirugía refractiva ya he hablado alguna vez en este blog (también aquí), incluso está disponible mi herramienta de 21 métodos de cálculo en este post, por lo que no voy a explayarme demasiado esta vez.

Simplemente presento una sencilla hoja de cálculo para el ajuste de potencia queratométrica con Haigis-L; Lo necesité el otro día para calcular una LIO post QxRx Hipermetrópica y preparé esto:

Si, es la versión para miopía, pero en la hoja de cálculo están las 2.

El método de ajuste de potencia para laser miópico está introducido en el método de cálculo que colgué, pero esta pequeña hoja de cálculo añade la opción de lasik hipermetrópico. Además hace la conversión de dioptrías a radios y lleva incluido el link al cálculo online con la fórmula Haigis, ya que la fórmula Haigis sigue sin estar publicada y no se permite el cálculo en un programa "Standalone".

Las 2 opciones realizan un ajuste en la potencia de queratometría medida con IOLMaster según la ecuación obtenida por regresiones lineales de 2 estudios del profesor W. Haigis. La bibliografía va incluida en cada apartado para el que quiera consultarla.

Esperando que pueda resultar de utilidad a alguien alguna vez, dejo aquí colgada la hoja de cálculo para descarga gratuita, a cambio de un tweet ;)

viernes, 9 de octubre de 2015

Sobre medidas de la profundidad de la cámara anterior (parte II)

Venimos de la primera parte de esta entrada, hablando de medidas de ACD y el error que podemos cometer si no descontamos el valor de la paquimetría corneal central a la medida ACD que nos proporcionan los biómetros.

Voy a centrarme ahora en una medida "rudimentaria", comparada con los últimos biómetros ópticos. La biometría ultrasónica por inmersión.

La gran ventaja de esta técnica de biometría es que el biómetro nos proporciona un ecograma que podemos (y debemos) interpretar. Los biómetros ópticos son rápidos, precisos... pero salvo los últimos modelos (lenstar©  , aladdin© ... que si proporcionan medidas de paquimetría, ACD, grosor de cristalino y hasta grosor retiniano) no proporcionan información sobre la disposición de las estructuras intraoculares. Además, el error en la medida de longitud axial con la biometría de inmersión suele ser menor debido a que no provocamos indentación corneal al evitar el contacto directo de la sonda con la córnea,

A-Scan de un biómetro óptico Lenstar LS-900

De modo que después de realizar la biometría debemos interpretar el ecograma: 
Cada cambio de interfase en las estructuras aparecerá representado en el ecograma como un pico (un eco), de modo que siguiendo la anatomía ocular en el eje anteroposterior nos encontramos con los siguientes ecos:
- cara anterior corneal - Epitelio corneal
- cara posterior - Endotelio
- cara anterior de cristalino 
- cara posterior de cristalino
- retina - membrana limitante interna
- grasa orbitaria

La siguiente imagen es una fotografía de la pantalla del biómetro de ultrasonidos que utilizo en la consulta. Podemos ver el ecograma en la zona inferior, las velocidades consideradas en el recuadro superior izquierdo y las 10 medidas de longitud axial en la zona superior derecha.
Vemos que el ecograma seleccionado, el nº 10, no es del todo limpio, hay bastantes artefactos en el cuerpo vitreo; eso podría ser ruido provocado por alteraciones en la homogeneidad del mismo cuerpo vitreo.


Ecograma de biometría ultrasónica de inmersión.

Si cambiamos a otra pantalla, obtenemos las medidas de los 10 A-Scans realizados, con las medidas independientes de ACD (C.A.), grosor de cristalino (C), vítreo (V) y longitud axial total (LT).
Valores de medidas de cada A-Scan
Vemos que la ACD medida en el A-Scan seleccionado (el nº 10) es de 4.44mm, con una longitud axial total de 24.41mm.

Si volvemos a fijarnos en la foto del ecograma, vemos que tenemos la opción de ajustar los marcadores. Esto nos sirve para ajustar las medidas en el caso de que el biómetro tome por bueno un eco que no se corresponda con lo real, es decir, decir al biómetro desde que puntos (iniciales, finales e  intermedios) queremos que nos de las medidas. Si nos fijamos en la foto, los 2 ecos que corresponden a la cornea (epitelio - endotelio) aparecen con la misma altura y muy próximos uno de otro; el biometro está considerando el primer eco, epitelio, como el lugar desde donde se comienza a medir la ALX. 

Ahora bien, podemos jugar, reajustando esas medidas, para ponerlo de la siguiente forma:
Ajuste de marcadores a endotelio


Como vemos ahora, señalado con la flecha roja, el marcador de medida está puesto en el 2º eco, el del endotelio. Es decir, ahora el biómetro nos medirá la ACD desde entodelio a cara anterior de cristalino. Hay que fijarse que la medida de la ALX se ha reducido (de 24.41 a 23.91mm) porque ya no considera el epitelio como el inicio de las medidas.


Y si vamos a la pantalla de datos, esto es lo que obtenemos:
Medida de la ACD ajustada sin paquimetría
La medida de la ACD ahora es de 3.94mm, que será la medida real de ACD que nos indicará si es posible implantar la lente fáquica o no. Vemos que el resto de medidas (excepto la ALX) no han variado.

Otra opción es medir la paquimetría con la misma técnica. Al fin y al cabo un paquímetro ultrasónico sigue el mismo principio físico de medidas, así que podemos ajustar el marcador de la cara anterior de cristalino, adelantándolo hacia el endotelio para medir la paquimetría (flecha roja de la siguiente foto). 

Ajuste de marcador a endotelio
Y en la pantalla de datos, en lugar de la medida ACD tenemos la paquimetría medida, en este caso, 0.54milimetros = 540 micras.
Siempre será más preciso realizar la paquimetría mediante un paquimetro dedicado o con OCT, pero para hacernos la idea de si las mediciones son correctas, nos puede servir.

Medida de paquimetría como valor ACD

Como veis, la biometría es mucho más que hacer una medición; hay que fijarse en los detalles para ajustar nuestras mediciones y pararse a pensar y analizar los resultados.




Sobre medidas de la profundidad de la cámara anterior (parte I)

Creo que aún no he hablado de forma concreta sobre biometrías, técnicas biométricas y medidas específicas para cálculo de lentes intraoculares. En el pasado curso sobre biometrías que di con Nuria Garzón, expliqué las diferencias entre técnicas de medición con ultrasonidos e interferometría óptica, pero en este post quiero comentar un pequeño detalle que no siempre queda claro.

Partimos de la necesidad de saber que profundidad tiene la cámara anterior (ACD = Anterior Chamber Depth) de un paciente; bien sea por el cálculo de la lente intraocular que queramos implantar en la cirugía de cataratas (algunas fórmulas utilizan esta medida), o porque tenemos pensado implantar una lente fáquica. Una lente fáquica es aquella lente intraocular que se coloca sin eliminar el cristalino, habitualmente se utilizan para la corrección de ametropías cuando no es seugo realizar un tratamiento corneal con láser.
Lente intraocular fáquica ICL V4C de Staar Surgical


Una de las pruebas que realizo dentro del protocolo que sigo cuando tengo que calcular una lente fáquica a un paciente es la biometría. La necesito, entre otras cosas, para calcular lentes pseudofáquicas "por si" hubiera alguna complicación en la cirugía y ésta terminase como una cirugía de cataratas (sustituyendo el cristalino). 
También necesito la biometría para saber la ACD, simplemente porque existen restricciones según la profundidad mínima de ACD, de modo que ante ACDs inferiores a 2.8 - 3mm (según el fabricante) no se debería implantar una lente fáquica por las posibles complicaciones endoteliales a medio/largo plazo.

La medida de ACD para este cálculo tiene que ser la medida REAL; ¿a que me refiero con medida real? Los biométros nos dan la distancia entre la córnea y la cára anterior del cristalino, pero considerando la córnea desde su epitelio corneal, de modo que tenemos que restar la paquimetría corneal para obtener la medida desde el endotelio corneal, puesto que esa será la medida REAL De la ACD, la que limitará si podemos implantar la lente fáquica o no.

La medida ACD real será la marcada en rojo, desde el endotelio corneal hasta la cara anterior de cristalino


Es decir, una vez realizada la biometría, deberemos realizar una paquimetría para restarla a la medida ACD que nos proporcionan la mayoría de biómetros, pues sino estamos siendo demasiado generosos, dando algo más de medio milímetro (según paquimetría) a la profundidad de la cámara anterior.

Ahora bien, ¿Todos los biómetros cometen este error? si... o no todos..? seguimos en la 2ª parte.



martes, 1 de septiembre de 2015

#EnOcasionesVeo...

Desde hace unos cuantos meses cuelgo en twitter imágenes o vídeos relacionados con la optometría y la oftalmología, de casos que me encuentro en mi consulta a diario. He agrupado la colección de tweets de #EnOcasionesVeo para que sea más sencillo seguirlos y consultarlos. Este timeline especial se puede consultar aquí: También queda en forma de widget en la barra lateral del blog.

martes, 16 de junio de 2015

Luz azul, filtros y smartphones...



Hace unas semanas publiqué en twitter una pequeña reseña sobre una aplicación que prometía actuar como filtro en la pantalla de nuestros smartphones para reducir la emisión de luz azul: TWILIGHT


Imagen promocional de Twilight
https://plus.google.com/communities/103571765300830975936


La luz azul, como se ha publicado en varias revistas cientificas (aquí, aquí y aquí por ejemplo), provoca una disminución de la secreción de melatonina por la glándula pineal al activar las células ganglionares melanopsínicas de la retina. La melatonina parece tener una clara importancia en el descanso y la sensación de bienestar en el ser humano, por lo que una reducción de su secreción podría conllevar un peor descanso y alteraciones en los ritmos circadianos (al menos es lo que dicen las publicaciones que he consultado)

Nuestros smartphones (tablets, portátiles, TV LED...) emiten en la franja de la longitud de onda azul, básicamente porque la luz blanca la consiguen mediante la emisión de 3 led: Rojo, verde y azul. 

Imagen de espectro de una pantalla LCD, cortesía de Carlos Tapia

Por tanto, y como era de esperar, tenemos 3 picos de emisión en las longitudes de onda azul (440nm), verde (550nm) y rojo (610nm aprox.).



La idea me parecía interesante: Si reducimos la cantidad de luz azul que nuestras células ganglionares llevan a la glándula pineal, la secrección nocturna de melatonina aumentaría y quizá podríamos descansar mejor después de leer un rato con nuestros dispositivos en la cama antes de dormir, o al menos, evitar añadir un estímulo negativo.



Rápidamente se me vino a la cabeza los filtros contra la luz azul que tanto han dado que hablar. En este caso no se trata de neuroprotección o de evitar la exposición a la luz azul por sus posibles efectos a largo plazo, sino de evitar la reducción de secreción de melatonina; Algo mucho más "aquí y ahora".

Pero las cosas hay que comprobarlas, porque de no hacerlo nos convertiríamos en crédulos y ese no es el espíritu crítico que mantiene este blog abierto.

Hablé con Carlos Tapia (@carlosceta22) y quedamos un par de días para hablar del asunto y hacer varias pruebas utilizando un Espectrógrafo (JAZ EL 200-XR1 de Ocean Optics): primero la prueba control, sin ninguna app, sobre el fondo blando de la pantalla del navegador con la web de google cargada y el brillo de la pantalla al máximo, midiendo siempre sobre el blanco del fondo.

Luego arrancamos la app y fuimos variando la intensidad de atenuación de intensidad de led azul en 15, 30, 50, 70  y 100%, realizando siempre una medida en las mismas condiciones y en el mismo área de la pantalla.

Los resultados de las gráficas de las diferentes intensidades son los reflejados en la gráfica 1:

Gráfica 1 - Espectro de emisión de la pantalla LCD de un smartphone Nexus 4: Pruebas control, y Twilight activado con intensidades de 15, 30, 50, 70 y 100% respectivamente.

Esclarecedor, ¿no?
El pico vertical de los 450nm corresponde al brillo del led azul; los otros 2 picos corresponden a los led verde y rojo respectivamente. Si la app funcionase como presupone, la disminución de amplitud en la intensidad de los led rojo y verde no debería verse reducida y si el pico de los 450nm. Sin embargo, el pico de 450nm es el de máxima intensidad de todo el espectro hasta una reducción del 70% según la app, momento en el cual es el rojo el más intenso.

Bien, esto nos dice algo. pero... ¿cómo se ve la pantalla? os adjunto unas capturas de las mismas 6 situaciones para que comprobéis como varía la "temperatura de color" del blanco de la pagina web usada en el test:









Pantallas con la variación de temperatura de color según la intensidad de filtro. 
Control - 15 - 30 - 50 - 70 y 100%.

Faltaría probar la app con una pantalla tipo AMOLED, puesto que la configuración de los LED es diferente a una pantalla como la probada en estos experimentos, ya que las pantallas amoled si son capaces de apagar completamente los pixels; Me quedo con la duda (de momento).

¿Significa esto que la aplicación no funciona?
Si... y no. La aplicación consigue reducir la intensidad de emisión de luz azul (y verde... y rojo...) aunque para conseguir que la intensidad del azul sea inferior a la del rojo tenemos que subir el filtro hasta el 70%. Habría que preguntarse si con una reducción de la intensidad de la luz de la pantalla se consigue un efecto similar, o anteponiendo un filtro gris (hay aplicaciones que realizan algo similar, pero con filtros neutros, lo cual hace bastante más agradable el uso del dispositivo electrónico).

La cuestión está en saber cual es el umbral sobre el cual las células ganglionares melanopsínicas se ven activadas porque es probable que no respondan igual a una baja intensidad de luz azul (en la que permanezcan inhibidas) que a una mayor. Hay estudios que analizan la respuesta de estas células ganglionares (como este o este) que hablan de un rango en el umbral de sensibilidad para la luz azul dependiendo de las condiciones luminosas a la que esté adaptada la célula.

También he escrito un mail al autor de la aplicación (Petr Nalevka - @petrnalevka), mostrándole 
los resultados de la espectrografía (para su sorpresa) y comentándole mis 
impresiones, y su respuesta ha sido en esta misma línea sobre el umbral de 
activación celular, aparte de explicarme las limitaciones en la programación de 
la app en los dispositivos con SO android.

Como conclusión, podemos preguntarnos si día a día se puede notar el efecto 
de la luz azul en las células ganglionares melanopsínicas y si la cantidad de luz 
azul emitida por nuestros dispositivos es la suficiente como para activarlas.
Me parece muy interesante todo este hilo de investigación, estaré pendiente de 
futuras publicaciones a ver si terminan aclarando esas incógnitas.

Agradecimientos:

Quiero agradecer la colaboración de Carlos Tapia por la ayuda imprescindible en 
la realización de las mediciones:
Gracias también a Jesús Pintor por el asesoramiento sobre las células ganglionares 
melanopsínicas (y por meterme en la cabeza estas ideas y estas preguntas)


martes, 26 de mayo de 2015

Curso de Biometría Avanzado


Bausch & Lomb ha organizado para el próximo 12 de junio un curso sobre biometría avanzado, lo impartimos Nuria Garzón del Instituto de Oftalmología Avanzada y este humilde optometrista.

Hablaremos sobre biometrías, empezando desde lo más básico: diferencias entre técnicas biométricas, fuentes de error, hasta cálculo avanzado, post cirugía refractiva, diseño de lentes intraoculares...

Dejo aquí la información sobre el curso. La inscripción la realizan los delegados comerciales de Bausch & Lomb, hay plazas limitadas.